感受态细胞制备的注意事项(同样的protocol,为啥你做的感受态就是不行?)

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篇首语:惜时专心苦读是做学问的一个好方法。本文由小常识网(cha138.com)小编为大家整理,主要介绍了感受态细胞制备的注意事项(同样的protocol,为啥你做的感受态就是不行?)相关的知识,希望对你有一定的参考价值。

感受态细胞制备的注意事项(同样的protocol,为啥你做的感受态就是不行?)

记得读研究生时,

实验室的规矩之一

就是新手要负责制备公用的感受态细胞,

即使有师兄师姐带着做,

结果仍然被鄙视。

心里不免产生一个疑问,

同样的protocol,

为啥我做的感受态就是不行?


作为新手的我们,

要想制备一款敏感却不脆弱的感受态,

得先了解

感受态细胞是什么

理化方法诱导细胞,使其处于容易吸收外源DNA的生理状态,这种细胞即为感受态细胞。


感受态细胞制备的常用方法

目前制备感受态细胞常用的方法有RbCl (KCl)法、CaCl2法、电击感受态法等。其中,RbCl (KCl)法制备的感受态细胞转化效率较高,但制备较复杂,不适合实验室用;CaCl2法简便易行,且转化效率完全可以满足一般实验要求,使用广泛;电击感受态法制备的感受态细胞转化效率高,操作简单,需要电击仪进行后续的转化工作。因此实验室感受态制备常用的两种方法就是CaCl2法和电击法。


实验室常用的有大肠杆菌、毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌感受态细胞,具体制备方法如下所示:


大肠杆菌感受态的制备(化转感受态)

1. 挑取宿主菌单菌落接种于3-5 mL LB液体培养基中,37℃下振荡培养12 h左右,直至对数生长后期。将该菌悬液以1:100-1:50的比例接种于100 mL LB液体培养基中,37 ℃振荡培养2-3 h至OD600在0.4-0.6之间。

2. 将培养液置于冰上放置30 min,然后于4 ℃下4000 r/min离心10 min,收菌。

3. 按3 mL菌液/1 mL的CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,冰上放置30 min后,4 ℃下4000 r/min离心5 min,弃去上清。

4. 加入700 μL的CaCl2轻轻悬浮细胞,加入300 μL的甘油混合均匀,即成感受态细胞悬液。

5. 感受态细胞分装成100 μL的小份,贮存于-80 ℃可保存半年。


毕赤酵母感受态的制备(电击感受态)

1. 从-80 ℃超低温冰箱中取出保存于甘油管中的毕赤酵母GS115或X-33,在YPD平板上划线,30 ℃恒温培养箱中培养 3天。

2. 挑取单菌落,接种在5 mL YPD液体培养基中,于28 ℃振荡培养18-24 h。

3. 取80-120 μL过夜培养物,接种到100 mL液体YPD培养基中,过夜生长至OD600 =1.15-1.5之间(最好是1.3),将细胞置4 ℃或冰上放置10 min。

4. 4 ℃下在2000 g离心5 min,收集细胞。加入100 mL冰冷的无菌水轻轻使菌体悬浮,再按上步离心。

5. 加入50 mL冰冷的无菌水悬浮清洗,两管合并到一管,再按上步离心,弃上清。

6. 细胞悬浮于40 mL 1 M冰冷的山梨醇,依上步离心后,再悬浮于20 mL 1 M冰冷的山梨醇,按上步离心,去上清。

7. 用大约100-200 μL的1 M冰冷的山梨醇重悬细胞,使细胞终浓度达到1×1010 cells/mL,放置在冰上备用(仅当天使用)(一般先加100 μL重悬,若细胞比较粘稠吸附不起来,再适当加50-100 μL)。




枯草芽孢杆菌感受态细胞的制备

1. 挑取宿主菌接种于3 mL 液体培养基中,37℃摇床培养过夜。

2. 从过夜培养物中取100 µL菌液,接种至用50 mL 离心管配好的5 mL SPI Medium中,37℃摇床培养,3 h后开始测OD600,当培养物生长到对数末期时约4.5 h,快速取200 µL接种到2 mL SP II Medium中,于37℃ 100 rpm摇床培养1.5 h。

3. 加20 µL 100×EGTA溶液,于37℃ 100 rpm摇床培养10 min,用1.5 mL离心管分装成500 µL每管。

4. 向管中加入适量的质粒,轻轻混匀于37℃ 100 rpm摇床培养30 min。

5. 将离心管转移到250 rpm摇床,37℃培养1.5 h。

6. 以4000 rpm离心收集菌体,弃部分上清液,留100 µL重悬菌体,涂相应的选择性平板,37℃过夜培养。




地衣芽孢杆菌感受态细胞的制备

1. 挑取宿主菌单菌落至10 mL枯草芽孢杆菌基本培养基中,37℃ 剧烈振荡培养16~18 h,250 r/min,培养至OD600为1.0。

2. 取1.5 mL该培养液加入到10 mL 37℃ 水浴预热的40 mL新鲜枯草芽孢杆菌基本培养基中,37℃剧烈振荡培养4 h,250 r/min。

3. 加入 10 mL芽孢杆菌饥饿培养基,37℃剧烈振荡培养4 h,250 r/min。

4. 将细菌在冰水浴冷却15 min,分装于0.5 mL Eppendorf 管中,于4℃ 10000 r/min 离心10 min,用预冷的水轻轻溶解悬浮,可直接进行实验,也可于-80℃冻存。



看起来protocol都很简单,

但制备的感受态效果却千差万别,

原因可能就是你没有注意到一些实验细节。

注意事项

01


细胞生长状态和密度:细胞生长密度以刚进入对数生长期时为宜,可通过检测培养液的OD600来控制,如DH5α菌株的细胞密度在5×107个/mL左右就比较合适。密度过高或不足均会影响转化效率。

02

实验操作时要格外小心:悬浮细胞时要轻柔,以免造成菌体破裂,影响转化效率。

03

制备好的感受态最好一次分装后快速冷冻于-80℃,反复冻融会极大地影响转化效率。


04

从离心机拿出离心管时应立即插入冰中,再拿到超净台,操作时不要用手触摸管底的菌体沉淀并保持无菌操作。

05

离心机和离心管要提前半小时预冷。

06


整个制备过程不要染菌,制备结束后,可在相应的平板上涂一支感受态细胞,检测其是否染菌。


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